Гистологические методы исследования

Гистологические методы исследования — Медицинская энциклопедия

Гистологические методы исследования

Гистологи́ческие методы исследования

Применяются для изучения строения и функции клеток и тканей человека, животных и растительных организмов в норме, патологии и эксперименте. Основой Г. м. и.

является гистологическая техника — комплекс методических приемов, используемых при изготовлении препаратов клеток и тканей для их микроскопического исследования.

Микроскопическое изучение клеток и тканей может проводиться двумя основными путями в зависимости от состояния исследуемого объекта: исследование живых клеток и тканей, исследование неживых клеток и тканей, сохраняющих структуру благодаря специальным приемам фиксации.

Изучение живых объектов — витальное (суправитальное) — дает возможность наблюдать физиологические процессы в клетках и тканях, их прижизненное строение. Оно проводится на клетках, свободно взвешенных в жидкой среде (клетках крови, эпителиальных клетках соскобов и др.

), а также на культурах клеток и тканей, выращенных на специальных питательных средах. Объектом прижизненного наблюдения могут быть тонкие, прозрачные тканевые пленки (брыжейка, плавательная перепонка).

В экспериментальных исследованиях используется метод биологических окон (вживление прозрачных камер) и изучение тканевых имплантатов в естественной прозрачной среде, например в передней камере глаза животных.

В зависимости от поставленной задачи при витальных исследованиях применяются различные специальные методы микроскопии: темнопольная, фазово-контрастная, флюоресцентная, поляризационная, ультрафиолетовая.

Витальные гистологические методы применяются в основном для биологических и медико-биологических исследований. Их широкое применение ограничено большими техническими трудностями, связанными со свойствами переживающих тканей. В медицинских исследованиях, особенно в практике патолого-анатомических лабораторий, используются методы исследования фиксированных объектов.

Цель фиксации сохранить прижизненную структуру клеток и тканей путем быстрого воздействия на них химическими агентами, предотвращающими развитие посмертных изменений. Выбор метода фиксации зависит от задач исследования и особенностей фиксируемого материала.

Так, для выявления тонких клеточных структур применяют фиксирующие смеси, содержащие соли тяжелых металлов (например, сулему) Лучшим фиксатором для цитологических целей служит четырехокись осмия, часто используемая и электронной микроскопии.

Универсальным фиксатором является формальдегид, применяемый в виде 10% раствора формалина. Чтобы фиксация была равномерной и полной, кусочки ткани должны быть небольшими, а объем фиксирующей жидкости — во много раз превосходить объем фиксируемого материала.

По окончании фиксации кусочки обычно промывают в воде или спирте. Твердые компоненты тканей (например, отложения солей кальция) удаляют с помощью методов декальцинации.

Наиболее быстрым и простым способом приготовления среза ткани, применяемым обычно при экспресс-диагностике, является замораживание кусочка и получение срезов ткани на замораживающем микротоме. Однако при этом трудно получить достаточно тонкие срезы, а также срезы с мелких объектов и распадающихся тканей.

Поэтому кусочки тканей, как правило, заливают в уплотняющие среды — парафин или целлоидин. Фиксированную ткань обезвоживают в спиртах возрастающей крепости, проводят через промежуточный растворитель (ксилол или толуол для парафина, спирт-эфир для целлоидина) и пропитывают парафином или целлоидином.

Заливка в парафин позволяет получить более тонкие срезы (от 5—8 до 1—2 мкм), чем заливка в целлоидин. Срезы для микроскопического исследования приготавливают с помощью санного или роторного микротомов. Сверхтонкие срезы (толщиной от 90—100 до 5—15 нм), необходимые для электронно-микроскопических исследований, готовят на ультратоме.

Ультратомы используют и в световой микроскопии для получения полутонких срезов. Приготовленные срезы окрашивают для четкого выделения структур клеток и тканей, которые по-разному воспринимают красители.

Основные красители — красящие основания и их соли (метиленовый синий, толуидиновый синий, азуры, гематоксилин, бисмарк коричневый) — окрашивают так называемые базофильные структуры (ядра клеток, основное вещество соединительной ткани).

Кислые красители — красящие кислоты и их соли (пикриновая кислота, эозин, эритрозин) — окрашивают ацидофильные, или оксифильные, структуры (цитоплазму клеток, коллагеновые, эластические волокна). От окраски следует отличать импрегнацию — специальный метод, основанный на способности определенных участков клеток и тканей восстанавливать тяжелые металлы (например, серебра, золота, осмия) из их солей и за счет этого приобретать интенсивную окраску.

Приготовление гистологического препарата завершается заключением его в среды, обеспечивающие сохранность структур объекта, его окраски и прозрачности. Наиболее часто для этих целей применяют органические смолы, например канадский бальзам.

Источник: Медицинская энциклопедия на Gufo.me

Источник: https://gufo.me/dict/medical_encyclopedia/%D0%93%D0%B8%D1%81%D1%82%D0%BE%D0%BB%D0%BE%D0%B3%D0%B8%D1%87%D0%B5%D1%81%D0%BA%D0%B8%D0%B5_%D0%BC%D0%B5%D1%82%D0%BE%D0%B4%D1%8B_%D0%B8%D1%81%D1%81%D0%BB%D0%B5%D0%B4%D0%BE%D0%B2%D0%B0%D0%BD%D0%B8%D1%8F

Объекты и методы исследования в Гистологии

Гистологические методы исследования

Основными Объектами исследования являются гистологические препараты, а главным методом исследования – микроскопирование.

Гистологический препарат должен быть достаточно прозрачным (тонким) и контрастным. Он изготавливается как из живых, так и из мёртвых (фиксированных) структур. Препарат может представлять собой взвесь клеток, мазок, отпечаток, плёнку, тотальный препарат и тонкий срез.

Процесс изготовления гистологических препаратов для микроскопических исследований включает в себя следующие основные этапы: 1) взятие материала и его фиксация; 2) уплотнение материала; 3) приготовление срезов; 4)окрашивание, или контрастирование срезов; 5) заключение срезов.

Для окрашивания применяются специальные гистологические красители с различным значением рН: кислые, нейтральные и основные. Структуры, окрашивающиеся ими, соответственно, называются оксифильными, нейтрофильными (гетерофильными) и базофильными.

Какими же методами пользуется гистологическая наука? Они довольно многочисленны и разнообразны:

Микроскопирование

Световая микроскопия. Современные микроскопы обладают высокоразрешающей способностью. Разрешающая способность определяется наименьшим расстоянием (d) между двумя рядом расположенными точками, которые можно видеть раздельно. Это расстояние зависит от длины световой волны (λ) и выражается формулой: d = 1/2 λ.

Минимальная длина волны видимой части спектра 0,4 мкм. Следовательно, разрешающая способность светового микроскопа составляет 0,2 мкм, а общее увеличение достигает 2500 раз.

Ультрафиолетовая микроскопия. Длина волны ультрафиолетового света – 0,2 мкм, следовательно, разрешающая способность ультрафиолетового микроскопа 0,1 мкм, но так как ультрафиолетовое излучение является невидимым, то для наблюдения исследуемого объекта необходим люминесцентный экран.

Флюоресцентная (люминесцентная) микроскопия. Коротковолновое (невидимое) излучение, поглощаясь рядом веществ, возбуждает их электроны, которые излучают свет с большей длиной волны, становясь видимой частью спектра. Таким образом, добиваются повышения разрешающей способности микроскопа.

Фазовоконтрастная микроскопия позволяет излучать неокрашенные объекты.

Поляризационная микроскопия применяется для изучения архитектоники гистологических структур, например, коллагенового волокна.

Электронная микроскопия даёт возможности изучать объекты, увеличенные в десятки тысяч раз.

Микрофотосъёмка и микрокиносъёмка. Эти методы позволяют изучать фиксированные объекты на фотографиях и живые микроскопические объекты в движении.

Методы качественных и количественных исследований

Гисто и цитохимия, в том числе количественная, позволяет проводить качественный анализ исследуемых объектов на тканевом, клеточном и субклеточном уровнях.

Цитоспектрофотометрия Даёт возможность изучать количественное содержание тех или иных биологических веществ в клетках и тканях на основе поглощения света определённой длины волны связанным ими красителем.

Дифференциальное центрифугирование позволяет разделять содержимое клеток, отличающихся между собой своей массой.

Радиография Основана на включении радиоактивной метки (например, радиоактивного йода, Н³-тимидина и др.) в обменный процесс.

Морфометрия позволяет производить измерение площадей и объёмов клеток, их ядер и органелл с помощью окуляр – и объект-микрометров и специальных сеток.

Применение ЭВМ для автоматической обработки цифрового материала.

Метод культуры тканей представляет собой поддержание жизнеспособности и деления клеток и тканей вне организма. Для этого используют специальные контейнеры с питательной средой, в которых создаются все необходимые условия для жизнедеятельности клеток.

С помощью этого метода можно изучать дифференцировку и функциональное становление клеток, закономерности их злокачественного перерождения и развития опухолевого процесса, межклеточное взаимодействие, поражение клеток и тканей вирусами и микроорганизмами, влияние лекарственных препаратов на обменные процессы в клетках и тканях и т. д.

Прижизненное (витальное) окрашивание используется для изучения явлений фагоцитоза и активности макрофагов, фильтрационной способности почечных канальцев и др.

Метод трансплантации тканей. Этот метод применяют с целью изучения поведения клеток и их морфофункционального состояния при их пересадке в другой организм. К примеру, этот метод используется для поддержания жизни животных, подверженных облучению смертельной дозой.

Микроманипуляции. Данный метод получил применение в молекулярной биологии, генной инженерии, а также при клонировании, когда с помощью микроманипулятора удаляют ядро из яйцеклетки с гаплоидным набором хромосом и пересаживают в неё ядро соматической клетки с диплоидным набором хромосом.

Источник: https://veterinarua.ru/gistologiya/19-ob-ekty-i-metody-issledovaniya-v-gistologii.html

Современные методы исследования в гистологии

Гистологические методы исследования

Предмет гистология. Методы гистологических исследований. Клеточная теория.

ВВЕДЕНИЕ В ГИСТОЛОГИЮ. СТРОЕНИЕ КЛЕТКИ.

Лекция 1

Гистология – это наука о строении, развитии и жизнедеятельности тканей материи. Ткани изучают в живом и неживом состоянии. Изучение гистологических объектов, их тончайшей структуры проводят при помощи микроскопов, которые увеличивают невидимые простым глазом детали строения в несколько сотен тысяч раз.

Курс гистологии условно разделен на следующие разделы:

1. Цитология – наука о клетке.

2. Эмбриология – наука о развитии, от зарождения до полного формирования организма.

3. Общая гистология – наука об общих закономерностях, присущих тканям.

4. Частная гистология – наука о строении, развитии органов и систем.

Главной задачей гистологии как предмета является получение знаний о микроскопическом и ультрамикроскопическом строении клеток, тканей органов и систем здорового организма, в неразрывной связи с их развитием и выполняемыми функциями.

Основными методами гистологических исследований являются микроскопирование и специальные (немикроскопические) методы (гистохимия, цитофотометрия, авторадиография и др.).

Объектами исследования могут быть живые или мертвые (фиксированные) клетки и ткани.

Для изучения клеток и тканей под микроскопом изготавливают гистологические препараты.

Основными методами исследования гистологических объектов яв­ляются световая и электронная микроскопия, которые широко исполь­зуются в клинической и экспериментальной практике.

Светооптические микроскопы. Основная оптическая часть микроскопа состоит из объектива и окуляра.

Объектив является наиболее ответственной оптической системой, дающей увеличенное изображение предмета.

Окуляр — оптическая система, которая служит в качестве лупы при визуальном на­блюдении увеличенного изображения предмета, даваемого объективом. Окуляр обычно увеличивает изображение в 5—25 раз.

Так же важнейшими характеристиками микроскопа являются раз­решающая способность и увеличение. Разрешающая способность — минимальное расстояние между двумя точками объекта, которые видны раздельно.

Увеличение микроскопа— величина, показывающая, во сколько раз линейные размеры изображения, формируемого оптической системой микроскопа, больше линейных размеров объекта. Увеличение микроскопа зависит от увеличений объектива и окуляра и численно рав­но произведению этих увеличений.

Современные оптические микроскопы имеют предел полезного увеличения до 1500 раз.

Электронная микроскопия. Электронные микроскопы обладают вы­сокой разрешающей способностью. Другими словами, в электронном микроскопе теоретически возможно повышение разрешающей способ­ности и соответственно увеличение изображения в 150000 раз больше по сравнению со световым микроскопом.

Наиболее часто в морфологиче­ских исследованиях используются просвечивающие электронные мик­роскопы, позволяющие получить плоскостное изображение изучаемого объекта. В последние годы активно применяются растровые (сканирую­щие) электронные микроскопы, способные создавать трехмерные изоб­ражение, т. е.

получать пространственное изображение структур.

Методы количественного исследования микроструктур в гистологиче­ских и цитологических препаратах. Количественная оценка микрострук­тур является необходимым условием получения объективных данных об их состоянии в норме, при экспериментальных воздействиях и в па­тологии.

Основными количественными показателями микроструктур являются морфометрические (число структур и их геометрические пара­метры) и денситометрические, отражающие концентрацию (оптическую плотность) химических веществ в микроструктурах.

Для выявления этих параметров применяют морфометрические и спектрофотометрические методы, а также автоматизированные системы обработки изображений.

Изучение организма на тканевом и клеточном уровнях требует при­готовления гистологических препаратов и их рассмотрения под микро­скопом. Цель приготовления гистологического препарата заключается в том, чтобы путем обработки привести исследуемый материал в удобное для изучения под микроскопом состояние, сделать его прозрачным и контрастным.

Часто изучение материала в свежем виде является наиболее целе­сообразным (например, наблюдение за работой ресничек мерцательно­го эпителия).

Для приготовления препарата берется чистое предметное стекло.

На его середину помещается капля воды или физиологического раствора, в которую погружают кусочки ткани, подлежащей рассмотре­нию, и под контролем микроскопа расправляют их препаровальными иглами.

Чтобы сделать препарат контрастнее и получить возможность хоро­шо различать отдельные его детали, объект подвергают окрашиванию. При этом пользуются тем, что разные структуры тканей и клеток по-раз­ному реагируют на тот или иной краситель.

Изготовление постоянных препаратов требует довольно большой затраты труден времени, такие препараты можно использовать в течение многих лет. Препараты готовят из небольших целых объектов (тоталь­ные препараты) или срезов; При всех условиях объект или срез должен быть тонким и прозрачным, иначе невозможно его изучение под микро­скопом.

Изготовление препарата состоит из нескольких этапов.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Источник: https://studopedia.ru/1_84905_sovremennie-metodi-issledovaniya-v-gistologii.html

Методы исследования в гистологии. Подготовка препаратов к микроскопии

Гистологические методы исследования

Методы исследования в гистологии включают приготовление гистологических препаратов и их изучение с помощью световых или электронных микроскопов.

Гистологические препараты представляют собой мазки, отпечатки органов, пленочные препараты, тонкие срезы кусочков органов, окрашенные тем или иным красителем (исследуются также нативные — неокрашенные срезы), помещенные на предметное стекло, заключенные в бальзам и покрытые тонким покровным стеклом.

Для изготовления гистологического препарата необходимо после взятия материала произвести его фиксацию в том или ином фиксаторе (формалине, спирте, а для электронной микроскопии — в глутаровом альдегиде и четырехокиси осмия).

Делается это для предотвращения процессов аутолиза и сохранения структуры органа, близкой к прижизненной.

Далее следуют этапы обезвоживания кусочка органа в спиртах возрастающей концентрации и в ксилоле с целью уплотнения тканей, что необходимо для изготовления тонких срезов.

Для придания кусочку органа еще большей плотности и гомогенности, обеспечивающей высококачественную резку, проводят его заливку в органическую среду — парафин, целлоидин (для световой микроскопии) и органические смолы (эпон, аралдит, дуркупан) — для электронно-микроскопического исследования.

Существуют также физические способы фиксации материала, наиболее распространенным из которых является быстрое замораживание кусочка органа с помощью жидко.го азота и других средств. Для резки замороженного материала используют специальные приборы — криостаты, или замораживающие микротомы.

Толщина срезов, предназначенных для световой микроскопии, не должна превышать 4-5 мкм, для электронной — 50-60 нм (такие ультратонкие срезы изготавливают на специальном приборе ультратоме, используя стеклянные или алмазные ножи и автоматический режим резки).

После получения срезов их помещают на предметные стекла, далее следуют этапы освобождения срезов от заливочной среды (при световой микроскопии) и окраски для придания срезам контрастности.

Среди гистологических красителей наиболее часто употребляется сочетание гематоксилина, маркирующего ядро (кислотные молекулы), и эозина, избирательно окрашивающего белковые молекулы (цитоплазматический краситель).

По окончании окрашивания срезы заключают в консервирующие среды (канадский, кедровый бальзамы) и накрываются покровным стеклом.

Основным методом гистологического исследования клеток, тканей и органов является световая микроскопия. В световом микроскопе для освещения объекта используются лучи видимого спектра.

Современные световые микроскопы позволяют получать разрешение порядка 0,2 мкм (разрешающая способность микроскопа — это то наименьшее расстояние, при котором две рядом расположенные точки видны как отдельные).

Разновидности световой микроскопии — фазово-контрастная, интерференционная, поляризационная, темнопольная и др.

Фазово-контрастная микроскопия — метод изучения клеток в световом микроскопе, снабженном фазово-контрастным устройством. Благодаря смещению фаз световых волн в микроскопе такой конструкции повышается контрастность структур исследуемого объекта, что позволяет изучать живые клетки.

Интерференционная микроскопия. В интерференционном микроскопе падающие на объект световые пучки раздваиваются — один пучок проходит через объект, другой — идет мимо. При последующем воссоединении пучков возникает интерференционное изображение объекта. По сдвигу фаз одного пучка относительно другого можно судить о концентрациях различных веществ в исследуемом объекте.

Поляризационная микроскопия. В микроскопах этого типа световой пучок разлагается на два луча, поляризованных во взаимно перпендикулярных плоскостях.

Проходя через структуры ткани со строгой ориентацией молекул, лучи запаздывают друг относительно друга вследствие неодинакового их преломления.

Возникающий при этом сдвиг фаз является показателем двойного лучепреломления клеточных структур (таким способом были исследованы, например, миофибриллы).

– Также рекомендуем “Люминесцентная микроскопия. Электронная микроскопия. Радиоавтография. Конфокальная микроскопия.”

Оглавление темы “Методы гистологии. Цитология.”:
1. Предмет гистологии. Задачи гистологии.
2. Микроскоп. Развитие микроскопии. Открытие клетки.
3. Методы исследования в гистологии. Подготовка препаратов к микроскопии.
4. Люминесцентная микроскопия. Электронная микроскопия. Радиоавтография. Конфокальная микроскопия.
5. Развитие цитологии и гистологии. История изучения клетки и тканей.
6. Цитология. Основы цитологии. Аксиомы цитологии.
7. Морфофункциональные системы клетки. Покровная система клетки – плазмолемма.
8. Транспорт веществ через плазмолемму. Эндоцитоз. Механизмы эндоцитоза.
9. Экзоцитоз. Межклеточные контакты. Виды межклеточных контактов.
10. Цитоплазма. Состав цитоплазмы. Ядро клетки. Ядерная оболочка.

Источник: https://meduniver.com/Medical/gistologia/13.html

Гистологическое исследование

Гистологические методы исследования

По данным Всемирной организации здравоохранения, ежегодно в мире диагностируют 10 млн новых случаев рака (в России – 0,5 млн). Важную роль в лечении занимает своевременность обращения к врачу и качество диагностических исследований.

К наиболее важным и информативным методам диагностики рака относится гистология опухоли.

Экспертное исследование в условиях лаборатории с новейшим оборудованием позволяет поставить точный, объективный диагноз и составить эффективную программу лечения.

Гистологическая диагностика обязательно входит в программу обследования пациентов с подозрением на онкологию перед операцией, химиотерапией, лучевой терапией.

Данный вид исследования предполагает непосредственное изучение тканей новообразования для подтверждения или опровержения онкологического диагноза. Забор тканей осуществляют из внутренних органов и тканей пациента в очаге поражения.

Затем биообразцы обрабатывают и изучают в лаборатории под микроскопом.

https://www.youtube.com/watch?v=NIRCkWaysjE

Метод дает возможность:

  • выявить рак на ранней стадии, а также метастазы;
  • определить нарушение функций, структуры исследуемых тканей;
  • правильно выбрать комбинацию методов лечения, технику операции.

Его применяют при онкозаболеваниях органов ЖКТ, кожи и мягких тканей, молочной и щитовидной желез, органов грудной клетки, а также при онкоурологических, онкогинекологических болезнях.

Зачастую гистологические исследования тканей дополняют цитологической диагностикой, в ходе которой врачи изучают отклонения в структуре и функциях клеток. В ряде случаев для проведения цитологии достаточно взять мазок (например, с тканей матки), смыв или образец жидкости. Гистологический же метод связан с необходимостью забора биоматериала из внутренних органов.

В каких случаях проводят гистологическое исследование материала

Гистологию проводят в случаях, когда необходимо:

  • подтвердить или опровергнуть поставленный диагноз, особенно если ситуация спорная;
  • провести дифференциальную диагностику для разграничения схожих болезней;
  • уточнить наличие злокачественной опухоли на ранней стадии;
  • изучить динамику развития новообразования (увеличение, разрастание);
  • проанализировать результаты и оценить эффективность текущего лечения;
  • спланировать проведение операции по удалению опухоли;
  • определить злокачественность тканей непосредственно в ходе операции для принятия решения об удалении или сохранении части органа.

Заменить гистологическое исследование другими методами невозможно. Его могут назначать в комплексе с обзорной и контрастной рентгенографией, УЗИ с допплерографией, МРТ и КТ, эндоскопическим исследованием, радионуклидной диагностикой, а также лабораторными анализами.

Методы гистологического исследования

Основной метод забора биоматериала из внутренних органов – биопсия. Ее проводят несколькими методами.

  • Пункционный. Распространенный метод для получения биообразцов тканей печени, простаты, молочных желез. Заключается во введении в орган тонкой биопсийной иглы.
  • Щипковый. Используют микроскопические щипцы, которые вводят эндоскопическим методом (бронхоскопия, колоноскопия, гастроскопия). Применяют при опухолях кишечника, пищевода, желудка, органов дыхания.
  • Аспирационный. Посредством тонкой трубочки отсасывают секреторную жидкость желез, миоматозных узлов матки.
  • Кюретаж. Применяют при исследовании полостей. Биоматериал соскабливают с поверхности посредством ложечки – кюреты.
  • Мазок. Используется для диагностики опухолей, расположенных на слизистых оболочках. Забор проводят миниатюрной щеткой.
  • Эксцизионный и инцизионный. Хирургическими инструментами иссекают часть или всю опухоль с последующим исследованием.

Специальной подготовки к гистологии не требуется. Забор биоматериала проводят натощак, чаще всего утром. Процедура проходит под местным наркозом, поэтому не вызывает болезненных ощущений. Если новообразование расположено в кожных покровах, достаточно седативных (успокаивающих) средств.

Все методы биопсии абсолютно безопасны для организма и связаны с минимальным травматизмом. Проводят процедуру под визуальным контролем врача посредством УЗИ, что исключает риск повредить органы.

Преимуществом биопсии является минимальное количество противопоказаний. К ним относят проблемы со свертываемостью крови, аллергическую реакцию на анестетики, сердечную недостаточность высокой степени тяжести. Женщинам не проводят процедуру в случаях, если она угрожает беременности.

Как проходит исследование

Лабораторное гистологическое исследование биопсийного материала проводят традиционным и ускоренным способом. Традиционно биоматериал проходит специальную обработку для сохранения формы. Его уплотняют и нарезают на пластины толщиной в несколько микронов для исследования под микроскопом. Результат можно получить в течение 7–10 дней.

Ускоренный способ применяют в случаях, когда биопсию проводят во время операции. Онкохирургу нужен результат исследования, чтобы определить – сохранять ткани или удалять их. В этом случае биообразец в течение 1 часа замораживают, разделяют и микроскопируют.

В онкологии применяют несколько видов микроскопирования:

  • световое – изучение биообразца в видимой части спектра;
  • ультрафиолетовое – изучение в ультрафиолетовой части спектра;
  • электронное – исследование под направленным пучком электронов;
  • флуоресцентное – исследование при флуоресцентном освещении после предварительного окрашивания биообразца;
  • интерференционное – определение концентрации и количественных показателей вещества в клетках;
  • цитоспектрофотометрию – исследование химического состава;
  • радиоавтографию – изотопную оценку активности обменных процессов.

В заключении специалист подробно описывает свойства всех видов тканей, которые были обнаружены в биообразце. Расшифровать результаты гистологии может только квалифицированный врач-онколог.

Возможны ли ошибки при исследовании?

Есть 4 основных условия, которые могут повлиять на результаты гистологии.

  1. Врач, который проводит биопсию, должен сделать прицельный забор образца пораженной ткани с максимальной точностью – непосредственно из опухоли. Для этого применяют новейшие УЗИ-аппараты, позволяющие врачу визуально контролировать свои действия.
  2. Хранение и препарирование биообразцов должно соответствовать медицинским нормам. В идеале образец хранят так, чтобы его можно было использовать для повторного исследования.
  3. Само исследование должен проводить специалист с высокой квалификацией и многолетним опытом.
  4. Исследовательское оборудование должно быть высокого класса и обладать широким спектром технических возможностей.

Если все условия соблюдены, то риск ошибки сводится к нулю.

Где пройти гистологическую диагностику

Данное исследование можно пройти в онкологическом центре «СМ-Клиника» в условиях стационара или амбулаторно.

  • Безопасные и безболезненные методы забора материала, индивидуальный подбор анестезии.
  • Онкологи, гистологи, диагносты с высокой квалификацией и опытом от 10 лет.
  • Собственная лаборатория с оборудованием, соответствующим мировым стандартам.
  • Высокоточные световые и электронные микроскопы.
  • Полный комплекс диагностики онкологических заболеваний на любой стадии.

Внимательные врачи детально разъяснят результаты исследования и предложат индивидуальную программу лечения. Записаться на прием можно на сайте или по телефону: +7 (495) 777-48-49

Вас могут заинтересовать статьи:

Источник: https://www.oncology-centr.ru/patiens/articles/gistologicheskoe-issledovanie/

МедЗабота
Добавить комментарий